Lab Micro Defensa

Question 1

Como pueden relacionarse los microorganismos y el hospedero?

Answer 1

-Comensalismo: asociación mutua entre los microorganismos y hospedero casi sin consecuencias.
-Simbiosis: beneficio mutuo entre dos especies.
-Parasitismo: un organismo obtiene beneficios para sí mismo a expensas de otro.
-Patógeno: microorganismo capaz de infectar o parasitar hospederos.
-Oportunista: microorganismo que vive en equilibrio en un hospedero sano pero que puede causar enfermedades cuando las defensas se debilitan.

Question 2

Que es la colonización?

Answer 2

Es la capacidad de las bacterias de establecerense y multiplicarense en piel o mucosa del hospedero manteniendo cierto número poblacional.

Question 3

Que es la microbiota residente habitual y transitoria?

Answer 3

-Residente: microorganismos cuya presencia no causa respuestas clínicas ni inmunes y se mantiene estable por un largo período de tiempo.
-Transitoria: microorganismos que se incorporan de forma temporal (hrs, días, semanas) del medio externo sin provocar un proceso infeccioso.

Question 4

Concepto de infección.

Answer 4

Es la entrada, establecimiento y multiplicación de microorganismos en la superficie o interior del hospedero con o sin manifestación clínica.
Puede ser subclínica o establecer una enfermedad infecciosa que presenta síntomas y signos.

Question 5

Que rol cumple la microbiota residente habitual en el organismo?

Answer 5

-Impiden la colonización por patógenos del medio externo compitiendo con ellos por el nicho ecológico, los nutrientes y produciendo moléculas antimicrobianas.
-Colaboran en la degradación de fibras (celulosa) y vitaminas (vitamina k2).
-Actúan en la absorción de ácidos grasos de cadena corta.
-Producen desintoxicación de sustancias nocivas.
-Fermentan carbohidratos digeribles.
-Intervienen en la modulación de la inmunidad.

Question 6

Cite ejemplos de microorganismos de la microbiota de cada tejido.

Answer 6

Question 7

Que es la bioseguridad?

Answer 7

Es el conjunto de medidas, normas y procedimientos destinados a controlar y minimizar el riesgo biológico.

Question 8

Cuales son los objetivos de la bioseguridad?

Answer 8

-Tomar conciencia sobre higiene y seguridad en el lugar de trabajo
-Revisar las condiciones de higiene y seguridad que se desarrollan las tareas en las respectivas áreas de trabajo.
-Proteger la comunidad
-Evitar los riesgos de infecciones intrahospitalarias
-Proteger al paciente y personal de salud.

Question 9

Cuales son los tipos de riesgo biológico?

Answer 9

-Sanguíneo: Se produce por exposición de mucosa o piel no intacta (pinchazo, herida, abrasión) a patógenos transmitidos por sangre.
-Aéreo: por inhalación de gotas y aerosoles procedentes de un paciente que porta el agente patógeno en la vía respiratoria y lo exhala al toser, al estornudar o al hablar.
-Oral: por ingestión de alimentos contaminados con patógenos.
-Contacto: por exposición directa de piel o mucosa a cualquier material que contenga el agente.

Question 10

Cuales son los factores de riesgo biológico?

Answer 10

Del agente: virulencia, dosis infectiva, toxicidad y espectro de acción
Del hospedador: edad, sexo, embarazo, inmunidad humoral (nivel de Ac) e inmunidad celular
Fuentes de infección: operaciones de rutina, recepción de muestras, centrifugación…
Fluidos con riesgo: sangre y líquidos orgánicos contaminados con sangre (pus, vómitos, orina) o procedentes de cavidades estériles (LCR, líquido pleural, líquido articular, etc.)

Question 11

Que es la esterilización?

Answer 11

Es la acción que produce la muerte de todo microorganismo, incluyendo las formas de resistencias como las esporas.
Eso se logra a través de agentes físicos y químicos respetando su tiempo mortal mínimo.

Question 12

Que métodos se utiliza para esterilización?

Answer 12

-Agentes físicos: calor seco, calor húmedo (autoclave), ebulición, filtros, radiaciones, pasteurización…
-Agentes químicos: líquidos como el hipoclorito de sodio, alcohol al 70%, alcohol etílico 60-90%…

Question 13

Cite el concepto de asepsia, antiséptico y desinfectante.

Answer 13

-Asepsia: es la condición libre de microorganismos que producen enfermedades o infecciones.
-Antisépticos: son compuestos que se aplican en seres vivos y son capaces de inhibir el desarrollo microbiano o destruirlos completamente.
-Desinfectantes: son sustancias que se aplican en objetos inanimados (material quirurgico, cama de pacientes…) para destruir microorganismos y prevenir infecciones.

Question 14

Como se realiza el puntaje de riesgo de tener faringitis estreptocóccica?

Answer 14

Question 15

Explique la técnica para recolectar una muestra de exudado faríngeo.

Answer 15

El paciente debe:
-Concurrir al laboratorio en completo ayuno o dos horas después de haber ingerido alimentos o bebidas.
-No haber iniciado ningún tipo de tratamiento con antimicrobianos, si inició tratamiento informar el nombre y dosis.
-No usar enjuague bucal el día de la toma de muestra.
Materiales necesarios: bajalengua, hisopo de algodón estéril y medio de transporte
Procedimiento: para la toma de muestra son necesarios dos hisopos. Se utilizará un bajalengua y se evitará rozar cualquier parte de la lengua con los hisopos. Uno de ellos se utilizará para hacer la investigación de microorganismos por cultivo, y el otro para hacer la detección de S. pyogenes por técnica molecular inmunológica (Test rápido).
Sentar al paciente y colocar su cabeza hacia atrás, iluminar la cavidad orofaríngea, con un bajalengua, bajar la lengua para facilitar el acceso a la parte posterior de la faringe.
Hacer un raspado firme haciendo girar los hisopos en áreas hiperémicas, purulentas o necróticas y en las membranas.

Question 16

Explique la técnica para recolectar una muestra de secreción conjuntival.

Answer 16

El paciente:
-No debe utilizar gotas oftálmicas
-No debe utilizar cosméticos en párpados
-No debe estar utilizando antibióticos
-No usar anestésicos antimicrobianos

Para tomar la muestra:
-Limpiar la superficie externa del ojo comprometido con suero fisiológico estéril.
-Humedecer el hisopo a utilizar con solución fisiológica estéril para favorecer el deslizamiento del hisopo sobre la conjuntiva y el arrastre de mayor cantidad de secreción.
-Con los dedos pulgar e índice, abrir los párpados del paciente y frotar el hisopo por el borde interno de la conjuntiva y el extremo interno del párpado superior. Rotarlo suavemente para que toda la superficie del algodón quede con secreción.
-Introducir cuidadosamente la muestra al tubo de medio de transporte de Stuart o Amies.
-Se recomienda obtener simultáneamente muestra conjuntival del ojo sano, de la misma forma descrita con otro hisopo, para su comparación y mejor interpretación
NOTA: Durante la toma de la muestra debe evitarse el contacto con el borde externo del párpado para no arrastrar microbiota colonizante.

Question 17

Explique la técnica para recolectar una muestra de exudado en otitis.

Answer 17

El paciente:
-No debe utilizar gotas
-No debe estar utilizando antibióticos

Otitis media: la muestra óptima es el aspirado timpánico por punción. No se recomienda obtener la muestra con hisopo, ya que la microbiota del conducto auditivo externo contamina la muestra y oculta el patógeno causal. Sólo puede usarse este sistema cuando existe perforación timpánica y fluye secreción en forma espontánea.
El material obtenido debe ser enviado al laboratorio en tubo estéril o en la misma jeringa si se requiere cultivo anaerobio. No se debe refrigerar.
Otitis externa: se debe tomar el lóbulo de la oreja del paciente, tirándola suavemente hacia fuera, dejando a la vista el conducto auditivo externo. Humedecer el hisopo cos suero fisiológico estéril, introducir el hisopo por el CAE hasta cerca del tímpano dirigiendo de atrás hacia delante, de abajo hacia arriba rotando, luego poner en el medio de transporte.

Question 17

Como está constituida la microbiota habitual de cada parte del tubo digestivo?

Answer 17

Question 18

Que es la gastroenteritis?

Answer 18

Es un síndrome, caracterizado por diarrea y vómitos con molestias abdominales.

Question 19

Que es la diarrea?

Answer 19

Es la deposición en una frecuencia mayor que la normal para la persona de heces sueltas o líquidas.

Question 20

Que es el síndrome diarreico agudo?

Answer 20

Son deposiciones en número mayor de 3 por día o heces líquidas, mucosas, purulentas o hemorrágicas.
Puede estar acompañado por fiebre, vómitos, dolor abdominal, deshidratación o desnutrición.

Question 21

Que son las disenterías?

Answer 21

Es un trastorno inflamatorio con sangre, pus, tenesmo, cólicos abdominales y fiebre.

Question 22

Que es una intoxicación alimentaria?

Answer 22

Es la ingesta de alimentos que tienen toxina preformada.

Question 23

Que microorganismos suelen causar gastroenteritis?

Answer 23

Question 24

Cuales son los factores de riesgo para tener gastroenteritis?

Answer 24

-Edad menor de 5 años -Desnutrición -Falta de agua potable -Falta de eliminación adecuada de excretas -Pobreza -Reemplazo de lactancia materna -Viajes a países subdesarrollados -Mala higiene de los alimentos o inadecuada cocción -Inmunosupresión -Contacto con animales -Tratamiento antibiótico -Gastrectomía o antiácidos

Question 25

Cuales son los principales microorganismos que causan diarrea del viajero?

Answer 25

Escherichia coli enterotoxigénica y enteroagregativa

Question 26

Cuales son los principales microorganismos que causan diarrea en niños (0-5 años)?

Answer 26

Rotavirus, escherichia coli y campylobacter

Question 27

Cuales son los mecanismos defensivos del huésped contra la gastroenteritis?

Answer 27

-Integridad gástrica -Moco -Inmunidad -Peristaltismo -Sales biliares -Microbiota residente habitual

Question 28

Que es la microbiota?

Answer 28

Es el conjunto de microorganismos vivos que tienen una relación simbiótica con el cuerpo y cumplen funciones para la salud. Se encuentra en boca, tracto digestivo, uñas, piel…

Question 29

Que funciones cumplen la microbiota intestinal?

Answer 29

-Nutrición: ayuda en la digestión y absorción de nutrientes. -Defensa: reconoce elementos extraños y desarrolla un sistema de prevención y rechazo a posibles agresiones.

Question 30

Como puede ser el mecanismo de la diarrea por microorganismos?

Answer 30

-Modelo invasivos (desintérico): el microorganismo penetra en la célula (invade) se reproduce y la destruye, propagándose a las células vecinas. Por eso hay una fuerte inflamación, dolor cólico, distensión abdominal, tenesmo, pujo y deposiciones con moco, sangre y pus. -Modelo enterotóxico (coleiforme): La bacteria se adhiere a la célula intestinal, no la destruye, le inyecta una enterotoxina que impide la absorción de electrolitos que se quedan en la luz con el agua, por eso hay abundante diarrea acuosa. Otros: adherencia, translocación mucosa, disminución de superficie absortiva, mixtos…

Question 31

Cuales son las principales bacterias que causan desinteria?

Answer 31

-Escherichia (enteroinvasiva, enterohemorrágica, enteroagregativa y enteropatógena) -Shigella -Salmonella -Campylobacter -Aeromonas -Yersinia -Clostridium difficile

Question 32

Cuales son las principales bacterias que causan diarrea acuosa?

Answer 32

-Escherichia coli enterotoxigénica -Vibrio cholerae

Question 33

Como se diagnostica el agente etiológico de la gastroenteritis?

Answer 33

Muestra: heces Diagnóstico directo: observación en fresco (parasitos), microscópica y coprocultivo.

Question 34

Que es el coprocultivo? Como se realiza?

Answer 34

Es un examen de laboratorio que consiste en el análisis de heces diarreicas para identificar microorganismos patógenos. Muestra: heces diarreicas (evitar heces formes). Materiales necesarios: guantes comunes y frasco estéril con cuchara. Técnica de recolección: 1. Tomar la muestra preferentemente por evacuación espontánea, en los primeros días de síntomas. 2. Colocar en recipiente limpio, seco, estéril (mejor plástico de boca ancha). 3. Seleccionar con espátula de madera una parte representativa (con moco, pus o sangre si los hay). 4. Cantidad mínima: 1 g de heces. 5. En lactantes: dejar al bebé sin pañal y recoger de las heces adheridas a la piel. Nunca del pañal. Conservación y transporte: enviar al laboratorio dentro de 2–4 horas. Si no es posible: colocar en medio de transporte Cary Blair con hisopo estéril y refrigerar a 4°C.

Question 34

Cual la diferencia entre citotoxina y enterotoxina?

Answer 34

-Citotoxina produce lesión o destrucción celular -Enterotoxina alteran el mecanismo hidroelectrolítico de la célula sin alteración micromorfológica.

Question 35

Como se analiza el coprocultivo?

Answer 35

-Examen microscópico: 1. En fresco con gotas de azul de metileno para observar leucócitos em matéria fecal. 2. Tinción de GRAM: se observa los microorganismos de morfologia diferenciable, no es muy sensible y especifico por la presencia de la microbiota. -Cultivo: se selecciona la porción de la muestra que tenga sangre, moco y pus para cultivar. El medio de cultivo se selecciona en función de los microorganismos que se sospecha (clínica, viajes, tratamientos…) y de forma rutinaria se hace para salmonella, shigella y ECEP.

Question 36

Como se detectan toxinas ante una gastroenteritis?

Answer 36

Muestra: heces Materiales necesarios: recipiente estéril de cierre hermético y sin medio de transporte. Técnica: igual a coprocultivo Conservación y transporte: remitir lo antes posible, se recomienda conservar la muestra en frio (2-8ºC) durante las primeras 48-72 h o congelada (-60 -80ºC) si supera 72 horas. Se utiliza más para Clostridium difficile.

Question 37

Que es el examen coproparasitológico? Como se hace?

Answer 37

El examen coproparasitológico sirve para diagnosticar infecciones intestinales parasitarias. Muestra: heces Materiales necesarios: guantes comunes y frascos estériles con cuchara y fijador. Técnica de recolección: 1. Tomar 3 muestras en días alternos, evacuando espontáneamente en recipiente limpio. 2. Con paleta de madera (bajalenguas), tomar cantidad del tamaño de una nuez y colocar en recipiente estéril. 3. Si hay mucus o sangre, tomar de esa zona. 4. Si se observan elementos blanquecinos (helmintos), colocar en un frasco aparte. 5. Mezclar la muestra con fijador (fenol, formalina, alcohol). 6. El último día recoger una porción en frasco limpio sin conservantes para trofozoítos. 7. Recomendar durante 3 días previos a la recolección no consumir verduras de hoja ni frutas como banana o cítricos. Conservación y transporte: Cerrar bien el frasco, anotar fecha y evitar derrames, guardar en bolsa, mantener en heladera. Repetir procedimiento día por medio hasta completar 3 muestras y llevar al laboratorio lo antes posible.

Question 38

Como se analiza el coproparasitológico?

Answer 38

Macroscópico: observar consistencia (formada, blanda, suelta, acuosa), grado de humedad, mucosidad o sangre. Buscar helmintos adultos visibles sin microscopio (ejemplo: ascaris lumbricoides y tenias). Microscopio: -En fresco: la muestra se homogeniza en solución salina, yodada o azul de metileno, se coloca en un portaobjetos con cubreobjetos y se observa al microscopio, eligiendo zonas con sangre, moco o pus. Permite detectar protozoarios en forma de trofozoítos o quistes y metazoarios (huevos y larvas). Debe hacerse el mismo día, ya que los trofozoítos se desintegran, aunque en medio de transporte pueden observarse hasta 24 horas. -Método de concentración por centrifugación o flotación, con objetivo de aumentar la sensibilidad (se visualiza con mayor facilidad los elementos parasitarios). -Tinciones específicas: Kinyoun, tricromica de Weber

Question 39

Para que sirve el método de MEGA?

Answer 39

Sirve para lo mismo que el Graham (más práctico y seguro). Se pasa por la zona perianal un trozo pequeño de gasa antes que la persona se levante de la cama, se realiza por 5 días. La gasa se coloca en un frasco cerrado con unos mililitros de formol (40%) para su conservación. En el laboratorio se centrifuga el formol que contiene las gasas, se observa el sedimento en microscopio.

Question 39

Para que sirve el método de Graham?

Answer 39

Para diagnosticar enterovius vermicularis. Consiste en una muestra de los márgenes del ano recogida con cinta adhesiva transparente al levantarse por la mañana, sin lavar la región. Es necesario recoger de 3-5 muestras en días consecutivos, que deben ser remitidas al laboratorio en un sobre de papel cerrado o en un frasco, nunca sueltos.

Question 40

Una vez analizadas las muestras del coproparasitológico, que se hace?

Answer 40

-Si es positiva, se inicia el adecuado tratamiento. -Si es negativa, no se descarta enteroparasitosis por el riesgo de falsos negativos (baja carga, muestra recogida/transportada de forma inadecuada, método inadecuado…) Luego de realizado el tratamiento se pueden realizar controles, esperando para helmintos 3 meses y protozoarios 2 meses.

Question 40

Como se hace la detección de virus ante una gastroenteritis?

Answer 40

Muestra: heces Conservación y transporte: temperatura ambiente o refrigeración a 4ºC. Diagnóstico directo: -Molecular inmunológico, detectando antígenos (rotavirus, adenovirus, astrovirus, norovirus) con técnicas de Elisa, inmunocromatografía o aglutinación. -Molecular genético con PCR, pero no es muy utilizado por el alto costo.

Question 41

Cuales son las técnicas utilizadas para detectar Helicobacter Pylori?

Answer 41

Question 42

Que métodos se utilizan para detectar Helicobacter Pylori en una biopsia?

Answer 42

-Gram-Nicolle + cultivo + antibiograma: útiles para diagnóstico de H. pylori. El cultivo es el más específico pero laborioso (microareofilo); permite probar sensibilidad a antibióticos y estudiar factores de virulencia. -Moleculares (ADN): muy sensibles y específicos, rápidos, no requieren condiciones especiales, permiten evaluar resistencia. -Prueba de ureasa: rápida y sencilla (cambio de color por aumento de pH), sensibilidad 80–90%, pero puede dar falsos negativos (uso de ibuprofeno, antibióticos, hemorragia digestiva alta).

Question 43

Que métodos se utilizan para detectar Helicobacter Pylori en heces?

Answer 43

Detección de antígenos en heces por inmunocromatografía o Elisa (se usa como diagnostico inicial y para verificar la eficacia del tratamiento en 4-6 semanas).

Question 44

Que otras pruebas se pueden realizar para diagnosticar una infección por Helicobacter Pylori?

Answer 44

-Test de aliento: es un método indirecto que se basa en la fuerte actividad de la ureasa de H. pylori. El paciente ingiere una solución con urea marcada con un isótopo de carbono 13 y se recoge el aliento 30 minutos después de la ingestión de la solución de urea; previamente se habrá recogido otra muestra de aliento basal. Si H. pylori se encuentra en el estómago, éste hidroliza la urea gracias a su ureasa y se libera CO₂ marcado que se absorbe, difunde a sangre, se transporta a los pulmones y es liberado con el aliento. Se usan para el diagnóstico y seguimiento del tratamiento antimicrobiano realizado 4 a 6 semanas después de finalizado. -Detección serológica: se usa como screening para grandes poblaciones buscando altos títulos de IgM e IgA + clínica indica infección activa y altos niveles de IgG indican infección activa o resuelta.

Question 45

Porque la sangre se considera estéril? Que ocurre si es invadido?

Answer 45

La sangre en condiciones normales no presenta microorganismos, pero en algunas enfermedades infecciosas puede haber invasión por parte de virus, parásitos, bacterias y hongos. La invasión persistente del torrente sanguíneo se considera una complicación severa que puede causar sepsis y shock séptico (mortalidad entre 25-73%), lo que requiere tratamiento antimicrobiano.

Question 46

De que formas el paciente puede adquirir bacteremias/fungemias?

Answer 46

1. De la comunidad: pacientes que no han tenido contacto reciente con el sist de salud, más frecuentemente asociado con infección del tracto urinario, neumonía e infección intraabdominal. 2. Asociado a cuidados sanitarios o de salud: están relacionadas a procedimiento diagnóstico o terapéutico ambulatorio sondas urinarias, catéteres intravenosos, hemodiálisis). 3. Nosocomial o intrahospitalaria: adquiridas luego de 48 h del ingreso hospitalario en pacientes sin antecedentes de contacto reciente con instituciones sanitarias, son causadas por microorganismos que tienen alta resistencia atimicrobiana.

Question 47

Cuales son los factores de riesgo para adquirir fungemia/bacteremia nosocomial?

Answer 47

-Ingresados en cuidados intensivos (numerosas instrumentaciones) -Pacientes quirúrgicos -Grandes quemados -Inmunosuprimidos (pacientes oncológicos, receptores de trasplante de órgano sólido, VIH en estadio de SIDA, esplenectomía, cirrosis hepática). -Hemodiálisis periódica

Question 48

Como se clasifica la forma de adquisición de bacteremia/fungemia según el foco?

Answer 48

-Primarias: son de origen desconocido (sin poder detectar el foco infeccioso), ejemplos: salmonela, streptococcus pneumoniae, brucella.. -Secundarias: cuando se puede identificar un foco infeccioso: piel, partes blandas, tracto urinario, pulmón, boca, oído, prostáta, cérvix…

Question 49

Para que sirve un hemocultivo?

Answer 49

Se utiliza para diagnosticar el microorganismo causal de la bacteremia/fungemia en el enfermo, se cultiva la sangre y se hace antibiograma.

Question 50

Como se hace el hemocultivo?

Answer 50

1. Se debe realizar la extracción de sangre así que aparecen los síntomas (fiebre/escalofríos) y antes de la adm de antimicrobianos. Si ya se está adm antimicrobianos se debe suspender o extrair la sangre justo antes de la siguiente toma. 2. Se toma 2-3-4 extracciones utilizando lugares diferentes de venopunción o con intervalos entre muestras. 3. Sembrar el volumen adecuado para mejorar la sensibilidad del método, debido al bajo número de microorganismos presentes en la mayoría de los casos. 4. Almacenar la muestra en botella adecuada, identificarla con los datos del paciente, del lugar de internación, nombre del médico que la solicita, el tratamiento que está recibiendo y el tipo de análisis que requiere (convencional o para crecimiento lento) 5. Llevar al laboratorio inmediatamente.

Question 51

Explique el paso a paso para realización de la toma de muestra para el hemocultivo (técnica).

Answer 51

PROCEDIMIENTO 1. Preparar previamente todo el material a utilizar. 2. Lavado de manos en el sector de enfermería del lugar. 3. Preparar campo estéril en el lugar de la extracción. 4. Colocar lazo en el brazo del paciente. Localizar la vena por palpación. 5. Frotarse las manos con alcohol en gel para reforzar el lavado previo y colocarse los guantes estériles. 6. ANTISEPSIA: Después de la palpación de la vena elegida para la punción se realiza la antisepsia de la zona con alcohol y solución yodada por tiempo suficiente. 7. No volver a palpar la vena (caso contrario volvería a contaminar el campo si usa guantes no estériles. Si son estériles puede palpar ante una duda). Realizar la venopunción (también denominada venocilisis) con el bisel de la aguja hacia arriba. Quitar el lazo. Extraer la sangre. 8. Introducir la sangre en el frasco para hemocultivos (proporción entre 10 y 20%) no sobrepasando la marca de llenado y no introduciendo aire. Mezclar para que actúe el anticoagulante. Desde este momento comienza el cultivo de la muestra. 9. Rotular cada frasco: Datos del paciente claro y preciso. 10. Enviar a Bacteriología. De no ser esto posible procure que los frascos sean colocados en estufa a 37 °C. 11. Repetir todo lo anterior con los otros 2 o 3 frascos.

Question 52

Cual es el volumen adecuado de sangre para sembrar en el hemocultivo según la edad del paciente?

Answer 52

-Adultos: 10 ml -Neonatos 1-2 ml -Lactantes 2-3 ml -Niños mayores 3-5 ml

Question 53

Cual es el intervalo adecuado para extraer la sangre para el hemocultivo?

Answer 53

Entre 30-60 min, si el paciente es crítico se debe comenzar con antimicrobianos sin esperar el intervalo pero con venopunciones en sitios diferentes.

Question 54

Como se analiza en el laboratorio de microbiología un hemocultivo?

Answer 54

Question 55

Cuales son los sistemas de incubación que pueden ser utilizados en el hemocultivo?

Answer 55

-Manual: lleva hasta 7 días, se observan según los signos macroscópicos de crecimiento (turbiedad o hemólisis) -Automatizado: lleva hasta 5 días, el equipo hace una lectura continua y emite una alarma cuando detecta un positivo. Algunos patógenos llevan hasta 4 semanas.

Question 56

Que métodos moleculares se utilizan para identificar el microorganismo en caso de bacteremia/fungemia?

Answer 56

1. PCR multiplex a partir de hemocultivos positivos, identifica:

Question 57

Ante un hemocultivo positivo, que debemos analizar?

Answer 57

Debemos analizar que tipo de microorganismo está presente, ya que es frecuente que haya contaminación de la muestra (microbiota de la piel principalmente).

Question 58

Cuando se considera un hemocultivo positivo verdadero?

Answer 58

-Cuando hay un microorganismo que no es una causa habitual de contaminación -Cuadro clínico compatible -Cuando hay un microorganismo que es causa habitual de contaminación en al menos 2 series de hemocultivo obtenido en distintas punciones y cuadro clínico compatible (debe además identificar que sea la misma especie y antibiotipo por métodos genómicos).

Question 59

Para que se utiliza el cultivo de punta de catéter?

Answer 59

Suele ser un foco de bacteriemia y fungemia muy frecuente en pacientes hospitalizado (sea vascular, periférico, central, venoso/arterial, transitorio/implantable…). Para el diagnóstico, el microorganismo presente en sangre (hemocultivo) también debe encontrarse en el catéter (cultivo de catéter).

Question 60

Explique la técnica para cultivar la punta de catéter.

Answer 60

Muestra: remover el catéter con procedimiento estéril, enviar al laboratorio de microbiología la punta previamente cortada (3-5 cm) Transporte: frasco estéril de boca ancha y tapado.

Question 61

Explique la técnica para extraer LCR.

Answer 61

1. Se realiza a través de punción lumbar con aguja espinal, a nivel del espacio intervertebral L3-L4 o L4-L5. 2. Volumen de extracción: 2-3 ml, recolectando en 3 tubos secos y estériles tapa a rosca. 3. Se conserva en temperatura ambiente, excepto si es para estudio virológico.

Question 62

Que estudios se hacen a partir de una muestra de LCR?

Answer 62

Previamente a los estudios se centrifuga el LCR para concentrar los microorganismos, a partir del sedimento: -Coloración con Gram Nicolle y Ziehl Neelsen -Observación en fresco con tinta china -Cultivo e identificación: se hace en medios enriquecidos por 48 hr en atmosfera con CO2, pruebas de identificación metabólica e bioquímica y antibiograma. -Molecular antígenico (aglutinación con látex e inmunocromatografía -Molecular genomico PCR multiple -Pruebas serológicas

Question 63

Cuales son las diferencias principales del LCR normal y en meningitis según distintos microorganismos?

Answer 63

Question 64

Que estudios se hacen a partir de la muestra de líquido articular?

Answer 64

1. Microbiológico: se realiza: tinción de Gram y la siembra en medios de cultivo convencionales con incubación aerobia y anaerobia + identificación y antibiograma La inclusión de otras tinciones y cultivos específicos depende de los diagnósticos diferenciales considerados. 2. Estudio cito-físico-químico.

Question 64

Cuales son las diferencias principales del líquido articular normal y anormal según distintas causas?

Answer 64

Question 64

Explique la toma de muestra de líquido articular.

Answer 64

El procedimiento se llama artrocentesis: 1. Sitio anatómico: se introduce una aguja estéril a través de la piel dentro del espacio articular. 2. Se extrae líquido mediante aspiración con jeringa.

Question 65

Explique la toma de muestra de líquido ascítico.

Answer 65

Se realiza mediante paracentesis: 1. Se hace una punción a nivel de la zona de unión del tercio externo con los dos tercios internos de una línea imaginaria que une ombligo y espina ilíaca anterosuperior izq. 2. Volumen de extracción de 20-50 ml 5. Recolectar el material de 3-4 tubos (1 para análisis microbiológica, 1 para estudio citológico, 1 para estudio cito-fisico-químico).

Question 66

Cuales son las diferencias principales del líquido ascítico según distintas causas?

Answer 66

Question 67

Explique la toma de muestra de líquido pleural.

Answer 67

Se realiza mediante toracocentesis: 1. Confirmar el nivel del líquido por matidez a la percusión (5-6º espacio intercostal en la línea axilar media-posterior). Nunca por debajo del 8º espacio por riesgo de lesión a vísceras abdominales, nunca por debajo del borde inferior de la costilla por riesgo de lesión al paquete vasculonervioso. 2. Se aspira con la jeringa 3. La muestra es remitida para estudio microbiológico, anatomopatológico y bioquímico.

Question 67

Que se analiza del líquido pleural?

Answer 67

-Microbiológico (tinción de gram, ziehl nelseen, cultivo, identificación y antibiograma). -Estudio anatopatológico: recuento de células hemaático y citología -Bioquímico: concentración de proteínas, glucosa, amilasa, gases…

Question 68

Cuales son las diferencias principales del líquido pleural según distintas causas?

Answer 68

Question 69

Como se diferencia staphylococcus y streptococcus en laboratorio?

Answer 69

Son cocos gram positivos (se ven morados): -Staph se agrupa en racimos -Strep se agrupa en cadenas 1. Catalasa: + → Staph – → Strep/Enterococcus 2. Si Staphylococcus: Coagulasa + → S. aureus Coagulasa – + novobiocina Sensible → S. epidermidis Resistente → S. saprophyticus 3. Si Streptococcus: se prueban con solubilidad en bilis, sensibilidad a optoquinina... para definir la hemolisis.